کنترل کیفی روزانه بانک خون؛ راهنمای جامع همراه با فرمهای پیشنهادی

کنترل کیفی روزانه بانک خون؛ راهنمای جامع همراه با فرمهای پیشنهادی
کنترل کیفی روزانه بانک خون مجموعهای از بررسیهای مستند برای اطمینان از صحت آزمایشهای ایمونوهماتولوژی، عملکرد تجهیزات، شرایط نگهداری فرآوردههای خونی و قابلیت ردیابی نتایج است. این برنامه باید پیش از گزارش نتیجه بیمار یا صدور خون انجام شود و برای هر کنترل مردود، توقف کار، بررسی علت و اقدام اصلاحی تعریفشده داشته باشد.
جهت عضویت در کانال آموزشی در تلگرام به لینک زیر مراجعه کنید:
https://t.me/Heamostica
مقدمهای بر کنترل کیفی روزانه بانک خون
کنترل کیفی روزانه بانک خون مجموعهای از بررسیهای برنامهریزیشده، مستند و قابل ردیابی است که برای اطمینان از صحت آزمایشهای ایمونوهماتولوژی، عملکرد مناسب تجهیزات، حفظ شرایط نگهداری فرآوردههای خونی و جلوگیری از گزارش یا صدور نتایج نامعتبر انجام میشود.
در بانک خون، یک خطای ظاهراً کوچک مانند کاهش فعالیت معرف آنتیهیومن گلوبولین، توقف آگیتاتور پلاکت، خروج دمای یخچال از محدوده مجاز، استفاده از سلولهای معرف نامناسب یا اشتباه در شناسایی نمونه میتواند به واکنش همولیتیک، تأخیر در تأمین خون یا آسیب جدی به بیمار منجر شود.
به همین دلیل، کنترل کیفی روزانه بانک خون نباید تنها به انجام یک کنترل مثبت و منفی محدود شود؛ بلکه باید تمام مسیر کار را از پذیرش نمونه و بررسی تجهیزات تا انجام آزمایش، انتخاب واحد و تحویل فرآورده خونی پوشش دهد.
نکته مهم: حدود دما، شدت واکنش، تناوب کنترل و معیارهای پذیرش ارائهشده در این مقاله عمومی هستند. هنگام تدوین SOP، دستورالعملهای سازمان انتقال خون ایران، الزامات اعتباربخشی ملی و بروشور سازنده هر معرف یا دستگاه در اولویت قرار دارند.
کنترل کیفی روزانه بانک خون چیست؟
کنترل کیفی روزانه بخشی از کنترل کیفیت داخلی (Internal Quality Control یا IQC) است و نشان میدهد که سیستم آزمایش در زمان انجام کار، توانایی تولید نتایج معتبر را دارد.
این برنامه معمولاً موارد زیر را در بر میگیرد:
- کنترل دما و شرایط محیطی؛
- بررسی عملکرد تجهیزات؛
- کنترل واکنشپذیری و اختصاصیت معرفها؛
- کنترل روشهای لولهای و ژل کارت؛
- کنترل دستگاههای اتوماتیک؛
- بازرسی ظاهری فرآوردههای خونی؛
- کنترل موجودی و تاریخ انقضا؛
- بررسی صحت ثبت و انتقال نتایج؛
- شناسایی نتایج نامنطبق و انجام اقدام اصلاحی.
کنترل کیفی فقط نشاندهنده عملکرد معرف نیست. برای مثال، اگر معرف Anti-A سالم باشد اما سوسپانسیون سلولی با غلظت نامناسب تهیه شود یا سانتریفیوژ عملکرد صحیحی نداشته باشد، نتیجه نهایی همچنان میتواند اشتباه باشد. بنابراین کنترل باید تا حد امکان کل سیستم آزمایش را ارزیابی کند.
فرم پیشنهادی تعیین دامنه کنترل کیفی روزانه
| ردیف | حوزه کنترل | مورد کنترل | تناوب | مسئول | فرم یا سند مرتبط | وضعیت |
|---|---|---|---|---|---|---|
| 1 | محیط | نظافت و ایمنی بخش | روزانه/هر شیفت | |||
| 2 | دما | یخچال خون و معرف | روزانه/هر شیفت | |||
| 3 | تجهیزات | سانتریفیوژ و انکوباتور | روزانه/روز استفاده | |||
| 4 | معرفها | Anti-A، Anti-B و Anti-D | هر روز استفاده | |||
| 5 | معرفها | AHG و چک سل | هر روز استفاده | |||
| 6 | سلولهای معرف | A1، B و Screening Cells | هر روز استفاده | |||
| 7 | روش | لولهای، ژل یا اتوماتیک | هر روز استفاده | |||
| 8 | فرآورده | بازرسی ظاهری و انقضا | روزانه و هنگام صدور | |||
| 9 | موجودی | حداقل ذخیره و FEFO | روزانه | |||
| 10 | اطلاعات | LIS و بارکد | روزانه |
برای مطالعه مبانی این حوزه، مقاله زیر ارتباط مستقیم با کنترل کیفیت بانک خون دارد:
ایمونوهماتولوژی چیست؟ معرفی کامل علم ایمونوهماتولوژی و کاربردهای آن در آزمایشگاه

تفاوت کنترل کیفیت داخلی با تضمین کیفیت
کنترل کیفیت داخلی، عملکرد روزانه سیستم آزمایش را پایش میکند؛ اما تضمین کیفیت (Quality Assurance) مفهوم گستردهتری دارد و تمام عواملی را که میتوانند بر کیفیت خدمات بانک خون تأثیر بگذارند در بر میگیرد.
آموزش کارکنان، صلاحیتسنجی، مدیریت اسناد، سرویس تجهیزات، خرید معرف، مدیریت عدم انطباق، شرکت در برنامههای ارزیابی خارجی کیفیت و تحلیل شاخصهای عملکرد، همگی بخشی از تضمین کیفیت هستند.
قبولی کنترل روزانه بهتنهایی ثابت نمیکند که تمام اجزای سیستم مدیریت کیفیت مناسباند؛ اما بدون قبولی کنترل روزانه نیز اعتبار نتایج بیماران قابل دفاع نخواهد بود.
فرم پیشنهادی تفکیک فعالیتهای کیفیت
| فعالیت | IQC | QA | EQA | مسئول اجرا | تناوب | مدرک ثبت |
|---|---|---|---|---|---|---|
| کنترل Anti-A و Anti-B | ✓ | روز استفاده | ||||
| ثبت دمای یخچال | ✓ | ✓ | روزانه | |||
| کالیبراسیون دماسنج | ✓ | دورهای | ||||
| صلاحیتسنجی کارکنان | ✓ | دورهای | ||||
| شرکت در مهارتآزمایی | ✓ | طبق برنامه | ||||
| بررسی عدم انطباق | ✓ | هنگام وقوع | ||||
| ارزیابی لات جدید | ✓ | ✓ | هر لات | |||
| تحلیل روند کنترلها | ✓ | ✓ | ماهانه |
کنترل کیفی در چه زمانی انجام میشود؟
کنترلهای روزانه باید پیش از گزارش نتایج بیماران یا صدور فرآوردهای که به آن سیستم وابسته است انجام و تأیید شوند.
اگر بانک خون بهصورت شبانهروزی فعالیت دارد، باید در SOP مشخص شود که منظور از «روز کاری» چیست، کنترلها در چه ساعتی انجام میشوند، اعتبار آنها تا چه زمانی است و در زمان تحویل شیفت چه اطلاعاتی باید منتقل شود.
کنترل مجدد در شرایط زیر نیز ضرورت دارد:
- پس از تعویض لات معرف؛
- پس از دریافت محموله جدید؛
- پس از بازسازی یا آمادهسازی معرف؛
- پس از تعمیر، سرویس یا کالیبراسیون دستگاه؛
- پس از قطعی برق؛
- پس از خروج دما از محدوده؛
- پس از تغییر نرمافزار یا تنظیمات دستگاه؛
- پس از مشاهده نتیجه غیرمنتظره؛
- هر زمان که سازنده انجام کنترل جدید را الزامی بداند.
فرم پیشنهادی ثبت زمان انجام کنترلها
| تاریخ | ساعت | رویداد آغازکننده کنترل | بخش یا سیستم کنترلشده | نتیجه | مجاز به ادامه کار؟ | نام و امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|
| آغاز روز کاری | بله/خیر | |||||
| تعویض شیفت | بله/خیر | |||||
| تعویض لات | بله/خیر | |||||
| تعمیر دستگاه | بله/خیر | |||||
| قطعی برق | بله/خیر | |||||
| خروج دما از محدوده | بله/خیر |
چکلیست آغاز روز در بانک خون
در آغاز روز یا شیفت، وضعیت عمومی بخش باید پیش از شروع آزمایشها بررسی شود. این بررسی شامل نظافت، ایمنی، دما، تجهیزات، معرفها، فرآوردهها، سامانه اطلاعاتی و موارد باقیمانده از شیفت قبل است.
وجود یک آلارم حلنشده، کنترل ناموفق یا عدم انطباق باز باید هنگام تحویل شیفت بهطور رسمی اعلام شود. شروع کار بدون اطلاع از وضعیت شیفت قبل میتواند موجب تکرار خطا یا استفاده ناخواسته از تجهیزات و معرفهای قرنطینهشده شود.
فرم پیشنهادی چکلیست آغاز روز یا شیفت
| ردیف | مورد بررسی | معیار پذیرش | نتیجه مشاهدهشده | قبول/رد | اقدام انجامشده | امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|
| 1 | نظافت سطوح | تمیز و خشک | ||||
| 2 | مواد ضدعفونیکننده | کافی و معتبر | ||||
| 3 | وسایل حفاظت فردی | کافی و در دسترس | ||||
| 4 | ظروف پسماند | ظرفیت و برچسب مناسب | ||||
| 5 | برق اضطراری و UPS | فعال و بدون هشدار | ||||
| 6 | یخچال خون | دما در محدوده | ||||
| 7 | یخچال معرف | دما در محدوده | ||||
| 8 | فریزر پلاسما | دما در محدوده | ||||
| 9 | آگیتاتور پلاکت | حرکت مداوم | ||||
| 10 | انکوباتور و بنماری | دمای مناسب | ||||
| 11 | سانتریفیوژ | سالم و بدون خطا | ||||
| 12 | معرفها | سالم و غیرمنقضی | ||||
| 13 | فرآوردههای خونی | سالم و معتبر | ||||
| 14 | موجودی اضطراری | مطابق حداقل ذخیره | ||||
| 15 | LIS و چاپگر | عملکرد صحیح | ||||
| 16 | موارد باز شیفت قبل | تعیین تکلیف شده |
کنترل کیفی روزانه دما
کنترل دما یکی از مهمترین اجزای کنترل کیفی روزانه بانک خون است. ثبت یک عدد از روی نمایشگر دستگاه کافی نیست. مسئول کنترل باید دمای فعلی، کمینه و بیشینه، نمودار ثبت مداوم، آلارمها، وضعیت در دستگاه و هرگونه انحراف ثبتشده را بررسی کند.
برای یخچال گلبول قرمز، محدوده نگهداری باید مطابق برچسب فرآورده و دستورالعمل ملی تعیین شود. در برخی استانداردها نگهداری گلبول قرمز در محدوده 1 تا 6 درجه سانتیگراد تعریف شده است؛ درحالیکه محدوده عملیاتی رایج بعضی مراکز 2 تا 6 درجه سانتیگراد است.
پلاکتها معمولاً در دمای 20 تا 24 درجه سانتیگراد و با آگیتاسیون ملایم و مداوم نگهداری میشوند. پلاسما و کرایو نیز باید مطابق برچسب فرآورده و استاندارد مرکز، معمولاً در دمای 18- یا 25- درجه سانتیگراد و سردتر، نگهداری شوند.
فرم پیشنهادی کنترل روزانه دما
| تاریخ | ساعت | تجهیز | محدوده مصوب | دمای فعلی | کمینه | بیشینه | وضعیت آلارم | قبول/رد | اقدام و امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| یخچال خون | |||||||||
| یخچال معرف | |||||||||
| فریزر پلاسما | |||||||||
| انکوباتور پلاکت | 20 تا 24°C | ||||||||
| بنماری | طبق SOP | ||||||||
| انکوباتور سرولوژی | طبق SOP |
فرم پیشنهادی بررسی خروج دما از محدوده
| شماره انحراف | تجهیز | زمان شروع | زمان پایان | حداقل/حداکثر دما | فرآورده یا معرف درگیر | اقدام فوری | تصمیم نهایی | تأیید مسئول فنی |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| انتقال/قرنطینه | مصرف/رد/بررسی بیشتر |
نکته مهم: هنگام خروج دما از محدوده، فرآوردهها نباید صرفاً پس از بازگشت دما به حالت طبیعی آزاد شوند. مدت انحراف، بیشترین تغییر دما، نوع فرآورده، شرایط بستهبندی، اطلاعات پایداری و دستورالعمل سازنده باید بررسی و تصمیم نهایی مستند شود.
کنترل کیفی تجهیزات بانک خون
تجهیزات بانک خون باید بهگونهای پایش شوند که خطاهای مرتبط با زمان، دما، سرعت، حجم و خوانش آزمایش پیش از تأثیر بر نتایج بیماران شناسایی شوند.
کنترل روزانه تجهیزات با کالیبراسیون متفاوت است. برای مثال، مشاهده عملکرد صحیح سانتریفیوژ در ابتدای روز جایگزین اندازهگیری دورهای دور واقعی با تاکومتر نیست. همچنین نمایش دمای 37 درجه روی انکوباتور، جایگزین کنترل آن با دماسنج معتبر نمیشود.
فرم پیشنهادی کنترل روزانه تجهیزات
| تاریخ | تجهیز | شناسه دستگاه | کنترل انجامشده | معیار پذیرش | نتیجه | قبول/رد | اقدام | امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| سانتریفیوژ سرولوژی | تمیزی، تایمر، قفل و خطا | عملکرد صحیح | ||||||
| سانتریفیوژ ژل | برنامه و روتور | مطابق روش | ||||||
| انکوباتور | دمای واقعی | طبق SOP | ||||||
| بنماری | دما، سطح و تمیزی آب | طبق SOP | ||||||
| سلواشر | سالین، مکش و چرخه | عملکرد صحیح | ||||||
| آگیتاتور پلاکت | حرکت و آلارم | مداوم و یکنواخت | ||||||
| سمپلر | نشتی و عملکرد پیستون | بدون نقص | ||||||
| اتوآنالایزر | خطاها، پروب و محلولها | آماده کار |
فرم پیشنهادی کنترل سانتریفیوژ
| تاریخ | شناسه سانتریفیوژ | تمیزی | قفل در | تایمر | برنامه انتخابی | صدا/لرزش | نتیجه نهایی | اقدام/امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| قبول/رد | قبول/رد | قبول/رد | طبیعی/غیرطبیعی | قبول/رد |
فرم پیشنهادی کنترل بنماری و انکوباتور
| تاریخ | تجهیز | دمای تنظیمشده | دمای واقعی | محدوده پذیرش | ساعت بررسی | وضعیت تمیزی | قبول/رد | امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| بنماری | ||||||||
| انکوباتور |
کنترل کیفی روزانه معرفهای گروه خونی
هدف از کنترل روزانه آنتیسرمهای گروه خونی، اثبات دو ویژگی اصلی است:
- واکنشپذیری: معرف باید با سلول دارای آنتیژن هدف واکنش نشان دهد.
- اختصاصیت: معرف نباید با سلول فاقد آنتیژن هدف واکنش غیرمنتظره ایجاد کند.
پیش از انجام کنترل عملکرد، بطری معرف باید از نظر تاریخ انقضا، شماره لات، تاریخ بازشدن، شرایط نگهداری، تغییر رنگ، رسوب، کدورت، آلودگی و سلامت قطرهچکان بررسی شود.
برای کنترل Anti-A از سلول A بهعنوان کنترل مثبت و سلول B یا O بهعنوان کنترل منفی استفاده میشود. برای Anti-B نیز سلول B کنترل مثبت و سلول A یا O کنترل منفی است. معرف Anti-D باید با سلول D مثبت واکنش و با سلول D منفی عدم واکنش نشان دهد.
نکته مهم: صرف مثبتشدن کنترل کافی نیست. اگر واکنش همیشگی یک معرف 4+ بوده و اکنون به 1+ کاهش یافته است، حتی اگر نتیجه هنوز مثبت باشد، باید احتمال کاهش فعالیت معرف، تغییر سلول کنترل، اشکال دستگاه یا خطای اپراتور بررسی شود.
فرم پیشنهادی کنترل روزانه معرفهای گروه خونی
| تاریخ | معرف | شرکت سازنده | شماره لات | انقضا | سلول کنترل مثبت | نتیجه و شدت | سلول کنترل منفی | نتیجه | قبول/رد | امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Anti-A | سلول A | سلول B/O | ||||||||
| Anti-B | سلول B | سلول A/O | ||||||||
| Anti-A,B | سلول A و B | سلول O | ||||||||
| Anti-D | سلول D مثبت | سلول D منفی | ||||||||
| Rh Control | طبق بروشور | طبق بروشور | ||||||||
| Anti-A1 Lectin | سلول A1 | سلول A2/O | ||||||||
| Anti-H Lectin | سلول O | طبق بروشور |
برای جزئیات بیشتر درباره کنترل معرفها، سل تایپ، بک تایپ و خواندن شدت واکنشها:
کنترل کیفی گروه خونی در بانک خون: استانداردها، چکلیست و رفع اشکالآموزش کامل سل تایپ و بک تایپ در بانک خونآموزش خواندن و درجه بندی شدت آگلوتیناسیون
کنترل کیفی سلولهای گروهبندی معکوس
سلولهای A1 و B برای بررسی آنتیبادیهای طبیعی موجود در پلاسما یا سرم بیمار استفاده میشوند. این سلولها باید از نظر ظاهر، همولیز، کدورت، آلودگی، تاریخ انقضا و واکنشپذیری کنترل شوند.
سلول A1 باید با نمونه یا کنترل حاوی Anti-A واکنش دهد و با نمونه فاقد Anti-A واکنش نشان ندهد. سلول B نیز باید با نمونه حاوی Anti-B واکنش مثبت داشته باشد.
سلول O، در صورت استفاده، کنترل سلولهای A1 و B محسوب نمیشود و کاربرد آن باید در SOP مشخص باشد؛ برای مثال ممکن است در بررسی آنتیبادیهای غیرمنتظره یا افتراق برخی مغایرتهای گروهبندی استفاده شود.
فرم پیشنهادی کنترل سلولهای A1، B و O
| تاریخ | سلول معرف | شرکت/لات | انقضا | کنترل مثبت | شدت واکنش | کنترل منفی | نتیجه | ظاهر سلول | قبول/رد | امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| A1 Cell | نمونه دارای Anti-A | نمونه فاقد Anti-A | ||||||||
| B Cell | نمونه دارای Anti-B | نمونه فاقد Anti-B | ||||||||
| O Cell | آنتیبادی شناختهشده | کنترل منفی |
کنترل کیفی آنتیهیومن گلوبولین
معرف آنتیهیومن گلوبولین (Anti-Human Globulin یا AHG) برای شناسایی گلبولهای قرمز پوشیدهشده با IgG و یا اجزای کمپلمان استفاده میشود.
معرف پلیاسپسیفیک معمولاً دارای فعالیت Anti-IgG و Anti-C3 است؛ درحالیکه معرفهای مونواسپسیفیک فقط علیه IgG یا یک جزء مشخص کمپلمان واکنش دارند. به همین دلیل، نوع کنترل باید با ترکیب معرف مطابقت داشته باشد.
برای کنترل معرف Anti-IgG از گلبولهای قرمز حساسشده با IgG استفاده میشود. معرف باید با این سلولها واکنش مثبت و با سلولهای حساسنشده واکنش منفی نشان دهد. برای معرف پلیاسپسیفیک، بررسی جزء کمپلمان نیز باید مطابق بروشور سازنده و برنامه کنترل کیفیت مرکز انجام شود.
فرم پیشنهادی کنترل روزانه AHG
| تاریخ | نوع AHG | شرکت سازنده | لات | انقضا | کنترل مثبت | نتیجه/شدت | کنترل منفی | نتیجه | قبول/رد | اقدام | امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| پلیاسپسیفیک | سلول حساسشده با IgG | سلول حساسنشده | |||||||||
| Anti-IgG | سلول پوشیدهشده با IgG | سلول حساسنشده | |||||||||
| Anti-C3 | کنترل کمپلمان | کنترل منفی |
کنترل چک سل
چک سل یا Coombs Control Cells، گلبولهای قرمزی هستند که بهطور کنترلشده با IgG پوشانده شدهاند. چک سل باید به تمام نتایج منفی مرحله آنتیگلوبولین اضافه شود.
ایجاد آگلوتیناسیون پس از افزودن چک سل نشان میدهد که AHG به لوله اضافه شده، فعالیت خود را حفظ کرده و به علت باقیماندن گلوبولین آزاد ناشی از شستوشوی ناکافی خنثی نشده است.
اگر پس از افزودن چک سل آگلوتیناسیون مشاهده نشود، نتیجه منفی آزمون معتبر نیست و آزمون باید از مرحله مناسب تکرار شود. افزودن چک سل بیشتر یا گزارش نتیجه منفی بدون تکرار قابل قبول نیست.
فرم پیشنهادی کنترل چک سل
| تاریخ | شماره نمونه/آزمون | نتیجه اولیه AHG | چک سل اضافه شد؟ | نتیجه چک سل | اعتبار نتیجه منفی | اقدام | نام کارشناس |
|---|---|---|---|---|---|---|---|
| منفی | بله/خیر | مثبت/منفی | معتبر/نامعتبر |
فرم پیشنهادی کنترل روزانه خود چک سل
| تاریخ | شرکت سازنده | شماره لات | انقضا | ظاهر سوسپانسیون | AHG مورد استفاده | شدت واکنش مورد انتظار | نتیجه واقعی | قبول/رد | امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
نکته مهم: کنترل روزانه بطری AHG و استفاده از چک سل در آزمونهای منفی، دو کنترل مرتبط اما متفاوت هستند و یکی جایگزین دیگری نمیشود.
برای اجرای دقیقتر کنترل AHG و آزمونهای کومبس، راهنماهای زیر را بخوانید:
کنترل کیفی آنتی هیومن گلوبولین (AHG)روش تهیه گلبولهای قرمز حساس شده با IgG یا Check Cellsروش انجام آزمایش کومبس مستقیمروش انجام آزمایش کومبس غیر مستقیم
کنترل کیفی سلولهای غربالگری آنتیبادی
سلولهای غربالگری آنتیبادی معمولاً مجموعهای از گلبولهای قرمز گروه O با فنوتیپ آنتیژنی مشخص هستند. آنتیگرام مربوط به هر لات باید در دسترس باشد و مشخصات آنتیژنی سلولها با شماره لات روی ویال مطابقت داشته باشد.
کنترل مثبت باید حاوی آنتیبادی شناختهشدهای باشد که آنتیژن متناظر آن حداقل روی یکی از سلولهای غربالگری وجود داشته باشد. در انتخاب کنترل باید به دوزیج آنتیژن نیز توجه شود؛ زیرا بعضی آنتیبادیها ممکن است با سلول هتروزیگوت واکنش ضعیفتری نشان دهند.
استفاده از یک آنتیبادی بسیار قوی بهعنوان تنها کنترل مثبت ممکن است کاهش حساسیت سیستم را پنهان کند. استفاده از یک کنترل مثبت ضعیف اما پایدار، در صورت تأیید و امکانپذیری، ارزیابی حساستری از عملکرد روش فراهم میکند.
فرم پیشنهادی کنترل سلولهای غربالگری
| تاریخ | نام مجموعه | لات | انقضا | سلول کنترلشده | آنتیژن هدف | کنترل مثبت | نتیجه/شدت | کنترل منفی | نتیجه | قبول/رد | امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Screening Cell I | I | ||||||||||
| Screening Cell II | II | ||||||||||
| Screening Cell III | III |
برای بررسی مفاهیم دوزاژ، غربالگری و شناسایی آنتیبادی:
اثر دوزاژ چیست؟ راهنمای Dosage Effect در ایمونوهماتولوژیغربالگری آنتی بادی ها در آزمایشگاه ایمونوهماتولوژیتعیین هویت آنتی بادی ها در بانک خون
کنترل کیفی روش لولهای
در روش لولهای، نتیجه به عوامل متعددی مانند غلظت سوسپانسیون سلولی، نسبت سرم به سلول، زمان و دمای انکوباسیون، شستوشوی مناسب، عملکرد سانتریفیوژ و نحوه خواندن واکنش وابسته است.
غلظت بیشازحد سلول ممکن است مقدار آنتیبادی در دسترس برای هر سلول را کاهش دهد و واکنش را ضعیف کند. سوسپانسیون بیشازحد رقیق نیز میتواند خواندن واکنش را دشوار یا غیرقابل تکرار کند.
در آزمایشهای آنتیگلوبولین، سلولها باید بهطور کامل شسته شوند تا گلوبولین آزاد حذف شود. پس از آخرین شستوشو، سالین باید بهدرستی تخلیه و معرف AHG بدون تأخیر اضافه شود.
فرم پیشنهادی کنترل روزانه روش لولهای
| تاریخ | عامل کنترل | معیار پذیرش | نتیجه مشاهدهشده | قبول/رد | اقدام |
|---|---|---|---|---|---|
| غلظت سوسپانسیون | مطابق SOP | ||||
| حجم معرف | مطابق روش | ||||
| حجم نمونه | مطابق روش | ||||
| زمان انکوباسیون | در محدوده معتبر | ||||
| دمای انکوباسیون | مطابق روش | ||||
| تعداد شستوشو | مطابق SOP | ||||
| عملکرد سانتریفیوژ | قابل قبول | ||||
| کنترل مثبت | واکنش مورد انتظار | ||||
| کنترل منفی | بدون واکنش | ||||
| چک سل | واکنش مثبت | ||||
| خوانش واکنش | قابل تفسیر |
تهیه صحیح سوسپانسیون سلولی یکی از پیششرطهای کنترل روش لولهای است:
راهنمای کامل و مرحله به مرحله طرز تهیه سوسپانسیون گلبول های قرمز برای آزمایش کومبس
کنترل کیفی روش ژل کارت
در روش ژل، اتوماتیک یا نیمهاتوماتیکبودن مراحل به معنای حذف کنترل کیفیت نیست. کارتها باید پیش از استفاده از نظر تاریخ انقضا، شماره لات، سلامت فیزیکی، خشکنشدن ژل، وجود حباب و شرایط نگهداری بررسی شوند.
کنترل ژل باید کل سیستم شامل کارت، سوسپانسیون سلولی، محلول رقیقکننده، زمان و دمای انکوباسیون، سانتریفیوژ و خوانش نتیجه را ارزیابی کند.
کارت دارای ترک، نشت، خشکشدگی ژل، حباب مؤثر یا ستون غیرطبیعی نباید استفاده شود.
فرم پیشنهادی کنترل روزانه ژل کارت
| تاریخ | نوع کارت | لات | انقضا | سلامت کارت | سطح ژل | حباب | کنترل مثبت | کنترل منفی | سانتریفیوژ | نتیجه نهایی | امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| قبول/رد | طبیعی/غیرطبیعی | ندارد/دارد | قبول/رد | قبول/رد |
کنترل کیفی دستگاه اتوماتیک بانک خون
اتوماسیون میتواند بخشی از خطاهای دستی را کاهش دهد، اما احتمال خطای مرتبط با بارکد، پروب، کارت، الگوریتم خوانش، نرمافزار و انتقال اطلاعات را از بین نمیبرد.
در آغاز روز باید وضعیت کنترلهای دستگاه، محلولها، پروبها، مخزن پسماند، کارتها، بارکدخوان، انکوباتور، سانتریفیوژ داخلی و ارتباط با LIS بررسی شود.
نتیجهای که دستگاه بهصورت خودکار تأیید کرده است، در صورت وجود پیام هشدار، مغایرت با سابقه بیمار یا الگوی سرولوژیک غیرمنطقی نباید بدون بازبینی انسانی گزارش شود.
فرم پیشنهادی کنترل دستگاه اتوماتیک
| تاریخ | شناسه دستگاه | کنترل مثبت | کنترل منفی | محلولها | پروب | بارکدخوان | ارتباط LIS | خطا/Flag | مجاز به کار؟ | امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| قبول/رد | قبول/رد | مناسب/نامناسب | سالم/نیازمند بررسی | قبول/رد | برقرار/قطع | بله/خیر |
کنترل کیفیت مرحله پیش از آزمایش
بخش قابل توجهی از خطاهای بانک خون پیش از آغاز آزمایش رخ میدهد. نمونهای که به بیمار اشتباه نسبت داده شده باشد، حتی با بهترین معرفها و تجهیزات نیز نتیجه ایمن تولید نمیکند.
روی نمونه باید حداقل شناسههای مورد تأیید مرکز، تاریخ و ساعت نمونهگیری و مشخصات نمونهگیر ثبت شده باشد. اطلاعات نمونه باید با درخواست خون مطابقت داشته باشد.
در بیماران دارای سابقه تزریق خون یا بارداری، زمان اعتبار نمونه باید مطابق SOP تعیین شود. همچنین گروه خون قبلی، آنتیبادی تاریخی، واکنش انتقال خون و نیازهای ویژه بیمار باید پیش از انتخاب فرآورده بررسی شوند.
فرم پیشنهادی کنترل نمونه بانک خون
| تاریخ | نام بیمار | شناسه دوم | تطابق درخواست و نمونه | تاریخ/ساعت نمونهگیری | نمونهگیر مشخص | حجم کافی | همولیز/لخته | سابقه بررسی شد | قبول/رد | علت رد |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| بله/خیر | بله/خیر | بله/خیر | ندارد/دارد | بله/خیر |
کنترل کیفی تعیین گروه ABO و RhD
در تعیین گروه ABO باید نتایج تایپ مستقیم (Forward Grouping) و تایپ معکوس (Reverse Grouping) با یکدیگر سازگار باشند.
در تایپ مستقیم، گلبولهای قرمز بیمار با Anti-A و Anti-B بررسی میشوند. در تایپ معکوس، سرم یا پلاسمای بیمار با سلولهای A1 و B آزمایش میشود.
هرگونه ناسازگاری بین این دو مرحله، مغایرت ABO محسوب میشود و باید پیش از گزارش قطعی گروه خون بررسی شود.
الگوی طبیعی تایپ مستقیم و معکوس
| گروه ABO | Anti-A | Anti-B | سلول A1 | سلول B |
|---|---|---|---|---|
| A | مثبت | منفی | منفی | مثبت |
| B | منفی | مثبت | مثبت | منفی |
| AB | مثبت | مثبت | منفی | منفی |
| O | منفی | منفی | مثبت | مثبت |
فرم پیشنهادی کنترل تعیین گروه خون بیمار
| تاریخ | شناسه بیمار | Anti-A | Anti-B | Anti-D | Rh Control | A1 Cell | B Cell | نتیجه اولیه | مغایرت دارد؟ | نتیجه نهایی | تأیید |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| بله/خیر |
فرم پیشنهادی بررسی مغایرت ABO
| مورد بررسی | نتیجه | انجام شد؟ | توضیح |
|---|---|---|---|
| تطابق هویت نمونه | بله/خیر | ||
| گروه خون قبلی | بله/خیر | ||
| تکرار تایپ مستقیم | بله/خیر | ||
| تکرار تایپ معکوس | بله/خیر | ||
| کنترل معرفها | بله/خیر | ||
| تهیه مجدد سوسپانسیون | بله/خیر | ||
| اتوکنترل | بله/خیر | ||
| DAT | بله/خیر | ||
| بررسی Mixed Field | بله/خیر | ||
| سابقه تزریق یا پیوند | بله/خیر | ||
| نتیجه نهایی بررسی |
برای افتراق رولو، بررسی مغایرت ABO و آزمون Weak D:
تشخیص افتراقی رولو از آگلوتیناسیون و تکنیک جایگزینی سالینعدم تطابق گروه بندی ABO: راهنمای جامع کارشناسان آزمایشگاهروش انجام آزمایش Du: دستورالعمل استاندارد انجام آزمایش
کنترل کیفی غربالگری و شناسایی آنتیبادی
در غربالگری آنتیبادی باید از سلولهای معرف دارای آنتیگرام معتبر و روش تأییدشده استفاده شود. کنترلهای مثبت و منفی باید نتایج مورد انتظار ایجاد کنند.
اگر غربالگری مثبت باشد، بررسی باید با پنل شناسایی آنتیبادی، اتوکنترل، DAT و در صورت نیاز فنوتیپ یا ژنوتیپ بیمار ادامه یابد. آنتیبادیهای تاریخی بیمار حتی اگر در نمونه فعلی قابل شناسایی نباشند، باید در انتخاب واحد خون در نظر گرفته شوند.
فرم پیشنهادی غربالگری آنتیبادی
| تاریخ | شناسه بیمار | Cell I | Cell II | Cell III | اتوکنترل | کنترل مثبت | کنترل منفی | تفسیر | نیاز به پنل؟ | امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| منفی/مثبت | بله/خیر |
کنترل کیفی کراس مچ
کراس مچ آخرین مرحله سرولوژیک برای بررسی سازگاری گلبول قرمز اهداکننده با سرم یا پلاسمای گیرنده است. روش کراس مچ باید بر اساس نتیجه غربالگری آنتیبادی، سوابق بیمار و سیاست مرکز انتخاب شود.
اگر بیمار دارای آنتیبادی بالینی مهم فعلی یا تاریخی باشد، واحدهای انتخابی باید آنتیژن منفی باشند و سازگاری آنها در مرحله آنتیگلوبولین بررسی شود.
کراس مچ نمیتواند خطای شناسایی بیمار یا نمونه را اصلاح کند؛ بنابراین کنترل هویت همچنان مهمترین مرحله است.
فرم پیشنهادی کنترل کراس مچ
| تاریخ | بیمار | شماره واحد | گروه بیمار | گروه واحد | غربالگری آنتیبادی | روش کراس مچ | IS | 37°C | AHG | چک سل | نتیجه نهایی | امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| سازگار/ناسازگار |
برای مرور کامل آزمون سازگاری:
کنترل ظاهری فرآوردههای خونی
فرآوردههای خونی باید هنگام دریافت، در طول نگهداری، پیش از صدور و هنگام بازگشت از بخش از نظر ظاهری بررسی شوند.
در گلبول قرمز باید به همولیز واضح، لخته، تغییر رنگ غیرطبیعی، کدورت، وجود گاز، نشتی یا آسیب کیسه توجه شود. در پلاکت، وجود لخته، تجمع شدید، تغییر رنگ، نشت یا توقف نامشخص آگیتاسیون اهمیت دارد.
پلاسما و کرایو باید در حالت منجمد، از نظر شکستگی کیسه، نشت و شواهد ذوبشدن بررسی شوند. پس از ذوب نیز زمان ذوب، شرایط نگهداری و تاریخ انقضای جدید باید ثبت شود.
فرم پیشنهادی بازرسی روزانه فرآورده خون
| تاریخ/ساعت | نوع فرآورده | شماره واحد | کیسه و پورت | رنگ/شفافیت | لخته/همولیز | وضعیت برچسب | نتیجه | اقدام/امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| سالم/نامناسب | قبول/رد |
پیوند کنترل فرآورده با پایش ایمنی انتقال خون:
کنترل فرآوردههای تغییر یافته
فرآوردههای شستهشده، اشعهدیده، تقسیمشده یا ذوبشده ممکن است تاریخ انقضای متفاوتی نسبت به فرآورده اولیه داشته باشند. زمان انجام فرآیند، نوع تغییر، مسئول انجام کار و تاریخ انقضای جدید باید روی فرآورده و در سوابق ثبت شود.
| شماره واحد | نوع تغییر | زمان انجام | روش/دستگاه | انقضای جدید | برچسب تأیید شد؟ | مسئول |
|---|---|---|---|---|---|---|
| بله/خیر |
برای کنترل اختصاصی فرآورده اشعه دیده:
کنترل واحدهای برگشتی
بازگرداندن واحد خون به موجودی تنها در صورتی مجاز است که سلامت کیسه، مدت خارجبودن از محل نگهداری، شرایط حمل و زنجیره دمایی آن قابل اثبات باشد.
| شماره واحد | زمان خروج | زمان بازگشت | دمای مستند | کیسه/سیستم سالم | تصمیم | تأیید |
|---|---|---|---|---|---|---|
| بله/خیر | بازگشت/قرنطینه/امحا |
کنترل موجودی و تاریخ انقضا
کنترل موجودی باید شامل تعداد فرآوردهها به تفکیک گروه خون، واحدهای نزدیک به انقضا، واحدهای رزروشده، فرآوردههای قرنطینه، واحدهای دارای ویژگی خاص و حداقل ذخیره اضطراری باشد.
برای مدیریت مصرف بهتر است از اصل «اولین انقضا، اولین مصرف» یا FEFO استفاده شود. فرآورده یا معرف منقضیشده نباید در محل اقلام قابل مصرف باقی بماند.
| فرآورده/گروه | موجودی کل | رزرو | قرنطینه | نزدیک انقضا | حداقل ذخیره | اقدام | امضا |
|---|---|---|---|---|---|---|---|
برای ارتباط مدیریت موجودی با مصرف بهینه خون:
کنترل سامانه اطلاعات آزمایشگاه (Laboratory Information System; LIS)
سامانه اطلاعات آزمایشگاه یا LIS باید بتواند اطلاعات بیمار، نتایج آزمایش، سابقه آنتیبادی، شماره فرآورده و وضعیت تحویل را بهدرستی ثبت و بازیابی کند.
تاریخ و ساعت سیستم، عملکرد بارکدخوان، چاپ برچسب، انتقال نتایج از دستگاه و هشدار ناسازگاری باید بررسی شوند. برای زمان قطعی سیستم نیز باید یک فرآیند جایگزین مستند وجود داشته باشد.
| مولفه | آزمون روزانه | نتیجه | زمان | اقدام اصلاحی | امضا |
|---|---|---|---|---|---|
| ساعت، بارکد، برچسب، انتقال و هشدار | قبول/رد |
ثبت سوابق کنترل کیفی روزانه بانک خون
سوابق کنترل کیفیت باید همزمان با انجام فعالیت ثبت شوند و نام معرف، شماره لات، تاریخ انقضا، نتیجه خام، معیار پذیرش، نام انجامدهنده و اقدام اصلاحی را نشان دهند.
ثبت عبارتهایی مانند «دما مناسب است» یا «کنترل خوب بود» کافی نیست. مقدار واقعی دما و شدت واکنش باید ثبت شود تا امکان تحلیل روند وجود داشته باشد.
در سوابق کاغذی، اصلاح اشتباه باید بهگونهای انجام شود که نوشته اولیه همچنان خوانا باقی بماند. استفاده از لاک، پاککردن اطلاعات یا بازنویسی بدون حفظ سابقه قابل قبول نیست.
| تاریخ/ساعت | آیتم | لات/انقضا | نتیجه خام | معیار پذیرش | وضعیت | اقدام | انجامدهنده/بازبین |
|---|---|---|---|---|---|---|---|
| قبول/رد |
اگر کنترل کیفی روزانه بانک خون مردود شد چه کنیم؟
اگر کنترل کیفی خارج از محدوده باشد، گزارش نتایج بیماران یا صدور فرآورده وابسته به آن سیستم باید متوقف شود.
نتیجه اولیه مردود نباید حذف شود. ابتدا باید احتمال خطای اپراتور، وضعیت معرف، شرایط نگهداری، تاریخ انقضا، عملکرد تجهیزات، زمان، دما، حجمها و نحوه آمادهسازی کنترل بررسی شود.
تکرار کنترل فقط زمانی قابل دفاع است که یک علت محتمل بررسی یا اصلاح شده باشد. تکرار مداوم کنترل تا زمان بهدستآمدن نتیجه قابل قبول، بدون شناسایی علت، روش علمی مناسبی نیست.
پس از کنترل مردود باید نتایج بیماران از زمان آخرین کنترل قابل قبول ارزیابی شوند. اگر احتمال تأثیر بر نتیجه وجود داشته باشد، نمونهها باید مجدداً آزمایش و نتایج قبلی در صورت لزوم اصلاح یا فراخوان شوند.
| تاریخ/ساعت | کنترل مردود | نتیجه خام | آخرین QC قابل قبول | علت محتمل | اقدام اصلاحی | نتیجه تکرار | ارزیابی نتایج بیمار | تأیید مسئول |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
ارزیابی لات جدید معرف (New Lot Verification)
کنترل روزانه با ارزیابی لات جدید متفاوت است. پیش از ورود لات جدید به مصرف روتین، عملکرد آن باید با لات قبلی یا یک روش معتبر مقایسه شود.
در این مقایسه باید نمونههای منفی، مثبت قوی، مثبت ضعیف و در صورت امکان نمونههای چالشبرانگیز بررسی شوند. برای سلولهای غربالگری و پنل نیز آنتیگرام لات جدید باید ارزیابی شود.
| معرف | لات قدیم/جدید | نمونه منفی | مثبت قوی | مثبت ضعیف | نمونه چالشبرانگیز | نتیجه مقایسه | تأیید |
|---|---|---|---|---|---|---|---|
| قبول/رد |
خطاهای رایج در کنترل کیفی روزانه بانک خون
یکی از خطاهای مهم، محدودکردن کنترل کیفیت به امضای فرمهاست. فرم کنترل کیفیت زمانی ارزش دارد که نتیجه واقعی در آن ثبت و هنگام مشاهده انحراف، اقدام مؤثری انجام شود.
- انجام کنترل پس از آزمایش نمونه بیماران؛
- ثبتنکردن شماره لات؛
- ثبت عبارت «مناسب» بدون نتیجه واقعی؛
- استفاده از کنترل منقضی یا نامناسب؛
- نادیدهگرفتن کاهش تدریجی شدت واکنش؛
- تکرار کنترل مردود بدون بررسی علت؛
- استفاده از چک سل بهعنوان تنها کنترل AHG؛
- بررسینکردن آلارمهای شبانه؛
- بازگرداندن خون بدون اثبات زنجیره دمایی؛
- آزادسازی گروه ABO دارای مغایرت حلنشده؛
- نگهداری اقلام منقضی در کنار اقلام قابل مصرف؛
- نداشتن برنامه مشخص برای قطعی برق یا خرابی تجهیزات.
| خطای مشاهدهشده | ریسک | اقدام فوری | اقدام پیشگیرانه | مسئول/مهلت |
|---|---|---|---|---|
برای تحلیل ریشهای خطاهای ایمونوهماتولوژی:
در واکنشهای گسترده و غیرمنتظره، افتراق پان آگلوتیناسیون اهمیت دارد:
جمعبندی کنترل کیفی روزانه بانک خون
کنترل کیفی روزانه بانک خون یک فرآیند چندلایه است که کنترل معرفها، تجهیزات، دما، روشهای آزمایش، فرآوردههای خونی، موجودی، اسناد و عملکرد کارکنان را در بر میگیرد.
یک کنترل کیفی مؤثر باید:
- پیش از شروع فعالیت وابسته انجام شود؛
- معیار پذیرش مشخص داشته باشد؛
- نتیجه واقعی آن ثبت شود؛
- شماره لات و انجامدهنده قابل ردیابی باشند؛
- تغییرات شدت واکنش و روند دما بررسی شوند؛
- برای کنترل مردود، اقدام اصلاحی تعریف شده باشد؛
- نتایج بیماران تحت تأثیر ارزیابی شوند؛
- بازگشت سیستم به کار با تأیید فرد مسئول انجام شود.
سوالات رایج درباره کنترل کیفی روزانه بانک خون
۱. آیا معرفها باید هر روز کنترل شوند؟
معرفهای اصلی ایمونوهماتولوژی باید در هر روز استفاده و مطابق بروشور سازنده و SOP مرکز کنترل شوند. اگر معرف در یک روز استفاده نمیشود، تناوب کنترل آن باید بر اساس مقررات مرکز تعریف شود.
۲. آیا کنترلها باید در هر شیفت تکرار شوند؟
این موضوع به ساعات فعالیت، پایداری سیستم، الزامات مرکز و دستورالعمل سازنده بستگی دارد. در بانک خون شبانهروزی باید اعتبار کنترل شیفت قبل و شرایط تکرار کنترل مشخص شده باشد.
۳. آیا چک سل جایگزین کنترل روزانه AHG است؟
خیر. کنترل روزانه AHG عملکرد معرف را بررسی میکند؛ درحالیکه چک سل اعتبار هر نتیجه منفی در مرحله آنتیگلوبولین را ارزیابی میکند.
۴. اگر کنترل مثبت ضعیفتر از روزهای قبل باشد چه باید کرد؟
وضعیت معرف، سلول کنترل، دما، زمان، سانتریفیوژ و نحوه انجام آزمایش باید بررسی شود. کاهش قابل توجه شدت واکنش نباید صرفاً به دلیل مثبتبودن نتیجه نادیده گرفته شود.
۵. آیا معرف منقضی با کنترل قابل قبول قابل استفاده است؟
خیر. قبولی کنترل باعث تمدید تاریخ انقضای معرف نمیشود.
۶. آیا دمای نمایشگر یخچال کافی است؟
خیر. دمای فعلی، کمینه و بیشینه، نمودار ثبت مداوم، وضعیت آلارم و اعتبار دماسنج باید بررسی شوند.
۷. آیا یک واحد برگشتی را میتوان دوباره استفاده کرد؟
فقط اگر زمان، دما، سلامت کیسه، بستهبودن سیستم و شرایط حمل آن مطابق SOP و بهطور مستند قابل قبول باشند.
۸. آیا اتوماسیون نیاز به کنترل روزانه را حذف میکند؟
خیر. دستگاه اتوماتیک نیز به کنترل معرف، کارت، پروب، بارکد، نرمافزار، خوانش و انتقال نتایج نیاز دارد.
۹. کنترل کیفی روزانه بانک خون باید قبل از نمونه بیمار انجام شود؟
بله. کنترل سیستم وابسته باید پیش از گزارش نتیجه بیمار یا صدور فرآورده انجام و قابل قبول باشد؛ در غیر این صورت فعالیت وابسته متوقف میشود.
۱۰. برای کنترل Anti-A و Anti-B از چه سلولهایی استفاده میشود؟
باید از سلولهای دارای آنتیژن متناظر برای واکنش مثبت و سلول فاقد آن آنتیژن برای واکنش منفی استفاده شود؛ الگوی دقیق طبق بروشور سازنده و SOP تعیین میشود.
۱۱. کنترل مثبت و منفی Anti-D چرا ضروری است؟
کنترل مثبت توان واکنش معرف با آنتیژن D و کنترل منفی اختصاصیت آن را بررسی میکند. کاربرد Rh Control نیز باید مطابق نوع معرف و دستورالعمل سازنده باشد.
۱۲. نتیجه کنترل کیفی را چگونه ثبت کنیم؟
تاریخ و ساعت، نام آزمون یا تجهیز، مقدار یا شدت واکنش واقعی، معیار پذیرش، لات و انقضا، نام انجامدهنده و هر اقدام اصلاحی باید ثبت شوند.
۱۳. پس از QC مردود، چه زمانی میتوان کار را از سر گرفت؟
پس از شناسایی یا بررسی علت محتمل، انجام اقدام اصلاحی، کسب کنترل قابل قبول و تأیید فرد مجاز میتوان سیستم را به کار بازگرداند.
۱۴. آیا تکرار کنترل تا رسیدن به نتیجه قبول مجاز است؟
خیر. تکرار بدون بررسی علت، نتیجه اولیه مردود را بیاعتبار نمیکند. علت محتمل باید بررسی و اقدام انجامشده مستند شود.
۱۵. آیا کنترل لات جدید همان کنترل روزانه است؟
خیر. ارزیابی لات جدید مقایسه عملکرد لات تازه با لات قبلی یا روش معتبر و شامل نمونههای منفی، مثبت قوی و مثبت ضعیف است.
۱۶. در مغایرت تایپ مستقیم و معکوس ABO چه باید کرد؟
گروه ABO نهایی تا رفع مغایرت نباید آزاد شود. هویت نمونه، معرفها، روش، سابقه بیمار و علل سرولوژیک باید مرحلهبهمرحله بررسی شوند.
۱۷. چه زمانی نتایج بیماران قبلی باید بازبینی شوند؟
وقتی QC مردود میتواند بر نتایج اثر گذاشته باشد، نتایج از زمان آخرین کنترل قابل قبول باید ارزیابی و در صورت لزوم تکرار یا اصلاح شوند.
۱۸. آیا ظاهر طبیعی فرآورده سلامت آن را ثابت میکند؟
خیر. بازرسی ظاهری فقط بخشی از کنترل است و جایگزین پایش دما، ردیابی زنجیره نگهداری یا کنترلهای میکروبی مرتبط نمیشود.
۱۹. در قطعی LIS یا برق چه اقدامی لازم است؟
فرآیند جایگزین مستند برای شناسایی بیمار، ثبت نتایج، صدور فرآورده و ورود مجدد دادهها لازم است و پس از بازیابی باید تطبیق سوابق انجام شود.
۲۰. معیار پذیرش QC از کجا تعیین میشود؟
معیار پذیرش از بروشور سازنده، الزامات قانونی و اعتباربخشی، SOP تاییدشده مرکز و دادههای اعتبارسنجی یا صحهگذاری همان روش و تجهیز تعیین میشود.
منابع معتبر برای مطالعه بیشتر در مورد کنترل کیفی روزانه بانک خون
الزامات نهایی هر مرکز باید با مقررات ملی، دامنه اعتباربخشی، دستورالعمل سازنده و روش اجرایی استاندارد همان مرکز تطبیق داده شود. منابع زیر چارچوبهای معتبر مدیریت کیفیت، تجهیزات و نگهداری سوابق را ارائه میکنند.


